造模機制 

通過結扎引起模型動物的冠狀動脈狹窄或閉塞，使該冠脈所供應的心肌缺血、壞死，從而引起模型動物心肌梗死。 

造模方法 

簡要的來說，一般冠狀動脈結扎術主要分為三步： 

1、首先，動物在麻醉后，在第四肋間行左胸開胸術； 

2、然后小心地將心包膜打開，在左心耳尖遠端結扎左冠狀動脈前降支(left anterior descending,LAD)，如 果結扎成功的話。心電圖(electrocardiogram,ECG)則顯示典型的ST段抬高，而觀察左心室前壁也會變白； 

3、最后關閉胸腔。如需制作心肌缺血再灌注損傷模型，可在結扎LAD后30分鐘再去除結扎，引起缺血再灌注損壞。

具體造模方法以下列幾個動物為例： 

豬： 

1、選用18～22kg小型豬，先應用30g/L戊巴bi妥在豬耳緣靜脈推注3～5ml使豬鎮靜，3～5分鐘后豬站立不穩而臥倒。 

2、然后迅速用套管針在豬耳緣靜脈建立靜脈通路，并緩慢推注30g/L戊巴bi妥(1ml/kg)麻醉后，將動物取仰臥位置于介入室手術臺。 

3、分離暴露氣管，氣管插管。連接呼吸機。沿胸骨第四肋間開胸，暴露心臟，提起心包縱向切開并做心包床。 

4、離LAD主干中下1/3交界處，并在其下穿根絲線備用于結扎。 

5、將4個多點固定式心外膜電極襯片縫在心臟表面，多導生理記錄儀描記結扎前、結扎后心外膜電圖，以ST段升高為造模成功標準。 

6、關閉胸腔，撤出呼吸機。 

犬：

1、一般選用比格犬，體重10～18kg，動物稱重后以3％戊巴bi妥鈉30mg/kg靜脈注射麻醉，右側位固定于手術臺。 

2、氣管插管，連接呼吸機。 

3、一般選用比格犬，體重10~18kg，動物稱重后以3%戊巴bi妥鈉30mq/kg靜脈注射麻醉，右側位固定于手術臺。

4、氣管插管，連接呼吸機。

5、沿胸骨左緣第4或第5肋間開胸，暴露心臟，剪開心包并做心包床，

6、分離LAD主干中下1/3交界處，并在其下穿根絲線備用于結扎。

7，在心臟表面縫上多點固定式心外膜電極襯片，多導生理記錄儀描記結扎前，結扎后心外膜電圖，以ST段升高為造模成功標準。

8、關閉胸腔，撤出呼吸機，按需要處理動物。

大鼠： 

1、選用成年Wistar大鼠，體重250g左右，39/L戊巴bi妥鈉10ml/kg進行腹腔注射，插管前給予atropine 20 ～30μg/kg腹腔注射。 

2、先行氣管插管，連接呼吸機；大鼠仰臥位四肢固定好，去毛，上界為胸骨上緣水平，下界為胸骨下緣水平。 

、消毒鋪單后，以心尖搏動最強點為中心，沿胸骨左緣3mm左右作一約1.5～2.0cm長縱形切口，逐層開胸進入胸腔。 

4、剪開心包膜，暴露左心耳，從左心耳下方2～3mm入針，結扎的中點在左心耳和肺動脈圓錐的交界上。 

5、結扎方向與左心耳邊緣平行，而且與房室交界線垂直。 

6、進針深度1.5～2.0mm，由于大鼠冠狀動脈細小不易于心肌分離，通常用縫合線連同部分心肌一起結扎，結扎的力度適中以防止損傷心肌或血管。 

7、把心臟放回胸腔，迅速縫合胸壁。停止人工呼吸。 造模成功的標志是心壁的顏色變白和心電圖監測ST段抬高。 

小鼠： 

1、選用25～30g小鼠。腹腔內注射戊巴bi妥鈉(50mg/kg)。 

2、待小鼠麻醉后將其用膠布固定于操作板上。剃凈胸部毛發，70％乙醇消毒，在直視下將22G套管針送入氣管，重建氣道，呼吸頻率設置于100～110次/min。 

3、取左側胸骨正中線，垂直肋骨，剪開皮膚。 

4、逐層分離胸大肌、胸小肌，在小鼠的呼氣相分別剪斷第三、四、五肋骨，使用開胸器將胸骨撐開、固定，暴露心臟，剪開心包膜。 

5、在顯微鏡下尋找左前降支，在左房下緣1mm左右、跨度1mm左右以10.0的眼科縫合線結扎左前降支。 

6、觀察心電圖ST-T改變及心肌顏色變化。 

7、拆除開胸器，以8-0的無創縫合線關閉胸腔。 

8、縫合皮膚，術后維持呼吸機約30分鐘，待小鼠清醒后撤機。 

需確認的信息 

1. 模型種屬（大鼠還是小鼠或是其他種屬）

2. 動物體重有無要求，年齡有無要求

3. 雌雄有無要求

4. 模型構建具體方案

5. 取材要求（采血、取組織樣本）